تعداد نشریات | 13 |
تعداد شمارهها | 147 |
تعداد مقالات | 1,465 |
تعداد مشاهده مقاله | 2,252,432 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 1,880,677 |
جداسازی و بررسی برخی خصوصیات محرک رشدی باکتریهای متحمل به نمک مولد پلیمر از خاکهای شور | ||
تحقیقات کاربردی خاک | ||
مقاله 3، دوره 6، شماره 3، آذر 1397، صفحه 24-36 اصل مقاله (649.09 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
مریم طالبی* 1؛ محسن علمائی2؛ رضا قربانی نصر آبادی3؛ سید علیرضا موحدی نائینی2 | ||
1دانشجوی دکتری دانشگاه غلوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان | ||
2دانشیار گروه خاک دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان | ||
3استادیار گروه خاک دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان | ||
چکیده | ||
گسترش شوری چالش بزرگی در بیشتر خاکهای زراعی مناطق خشک و نیمهخشک میباشد. اخیراٌ استفاده از روشهای زیستی همانند استفاده از ریزجانداران خاکزی به منظور کاهش اثرات زیانبار شوری بر گیاهان، اهمیت زیادی پیدا کرده است. در این مطالعه سعی شده است باکتریهای متحمل به نمک از خاکهای شور جداسازی گردند و خصوصیات محرک رشدی آنها همانند توانایی تولید اکسین، سیدروفور، سیانیدهیدروژن، مقاومت به خشکی و آزادسازی فسفر و پتاسیم از منبع نامحلول معدنی، بررسی شود. از بین 20 جدایه متحمل به نمک مولد پلیمر، بر اساس آزمون خاصیت محرک رشد گیاه، در نهایت دو جدایه شماره 17 و 5 بهعنوان جدایه برتر انتخاب شدند. نتایج نشان داد که میانگین مقدار پلیمر از 8/0 تا 2/4 گرم بر لیتر متغیر بود و بیشترین آن در جدایه 17 به دست آمد. اکثر جدایهها قادر به تولید هاله نارنجی در محیط CAS-Agar بودند که بیشترین مقدار سیدروفور در جدایه 5 با نسبت قطر هاله به کلنی برابر با دو مشاهده شد. بیشترین میزان تولید اکسین در جدایه شماره 17 با مقدار 14/8 میلیگرم بر لیتر مشاهده شد. همچنین این جدایه بالاترین توانایی آزادسازی پتاسیم معدنی با مقدار 2/12 و 62/18 میلیگرم بر لیتر بهترتیب در حضور و عدم حضور نمک داشت. اغلب جدایهها مقاومت به خشکی در سطح 2 و 5 بار از خود نشان دادند. بیشترین مقاومت به خشکی در سطح 15بار در جدایه شماره 17 و 5 بهترتیب با 6/55 و 2/53 درصد کاهش رشد نسبت به محیط بدون تنش مشاهده شد. آزمایشهای تعیین ترادف ژنی SrRNA16 نشان داد که جدایه 17 به میزان 4/99 درصد با سویهDSM13 Bacillus licheniformis و جدایه 5 به میزان57/99 درصد با سویه Bacillus megaterium NBRC 15308 قرابت فیلوژنی دارند. | ||
کلیدواژهها | ||
اکسین؛ پلیساکارید؛ مقاومت به خشکی | ||
مراجع | ||
Abolhassani-Zeraatkar M., Lakzian A., Haghnia G., Astarayi A. and Sarcheshmepour M. 2009. The study of salt and drought tolerance of Sinorhizobium meliloti isolated from Kerman province. Iranian Journal of Field Crops Research, 6(1): 1-10. (In Persian)
Alexander D.B. and Zuberer D.A. 1991. Use of Chrome Azurol S reagents to evaluate siderophore production by rhizosphere bacteria. Biology and Fertility of Soils, 12: 39-45.
Bagnasco P., De La Fuente L., Gualtieri G., Noya F. and Arias A. 1998. Fluorescent pseudomonas spp. as biocontrol agents against forage legume root pathogenic fungi. Soil Biology and Biochemistry, 30: 1317-1322.
Bartels D., and Sunkar R. 2005. Drought and salt tolerance in plants. Critical Reviews in Plant Sciences, 24: 23-58.
Bergmann D., Zehfus M., Zierer L., Smith B. and Gabel M. 2009. Grass rhizosheaths: Associated bacterial communities and potential for nitrogen fixation. Western North American Naturalist,69(1): 105-114.
Bibi F., Chung E.J., Yoon H.S., Song G.C., Jeon C.O. and Chung Y.R. 2011. Haloferula luteola sp nov., an endophytic bacterium isolated from the root of a halophyte, Rosa rugosa, and emended description of the genus Haloferula. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology,61: 1837-1841.
Bouchotroch S., Quesada E., Izquierdo I., Rodrı´guez M. and Be´jar V. 2000. Bacterial exopolysaccharides produced by new discovered bacteria belonging to the genus Halomonas isolated from hypersaline habitats in Morocco. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 24: 374-378.
Donate-Correa J., Leon-Barrios M. and Perez-Galdona R. 2004. Screening for plant growth-promoting rhizobacteria in Chamaecytisus proligerus, a forage tree-shrub legume endemic to the Canary Island. Plant and Soil, 266: 261-272.
El-Tarabily K.A., and Youssef T. 2010. Enhancement of morphological,anatomical and physiological characteristics of seedlings of the mangrove Avicennia marina inoculated with a native phosphate-solubilizing isolate of Oceanobacillus picturae under greenhouse conditions. Plant and Soil, 332: 147-162.
Ghanem M.E., Han R.M.,Classen B., Quetin-Leclerq J., Mahy G., Ruan C.J., Qin P., Perez-Alfocea F., and Lutts S. 2010. Mucilage and polysaccharides in the halophyte plant species Kosteletzkya virginica: localization and composition in relation to salt stress. Journal of Plant Physiology, 167(5): 382-392.
Gontia I., Kavita K., Schmid M., Hartmann A. and Jha B. 2011. Brachybacterium saurashtrense sp nov., a halotolerant root-associated bacterium with plant growth-promoting potential. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 61: 2799-2804
Grover M., Ali S. Z., Sandhya V., Rasul A. and Venkateswarlu, B. 2011. Role of microorganisms in adaptation of agriculture crops to abiotic stresses. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 27(5): 1231-1240.
Hu X., Chen J. and Guo J. 2006. Two phosphate- and potassium-solubilizing bacteria isolated from Tianmu Mountain, Zhejiang, China. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 22: 983-990.
Jose Marti´nez-Ca novas M., Quesada E., Marti´nez-Checa F., d Moral A. and Be jar V.2004. A Taxonoic study to establish the relationship between exopolysaccharide-producing bacteria strains living in diverse hypersaline habitats. Current Microbiology, 48: 348-353.
Liu W., Xushi X., Xianghua W., Qiyin Y., Yongming L. and Peter C.h. 2006. Decomposition of silicate minerals by Bacillus mucilaginosus in liquid culture. Environmental Geochemistry and Health, 28: 133-140
Lloret J., Wulff B.B.H., Rubio J.M., Downie J.A., Bonilla i. and Rivilla R. 1998. Exoplysaccharide II production is regulated by salt in the halotolerant strain Rhizobium meliloti EFBI. Applied and Environmental Microbiology, 64(3): 1024-1028.
Mancuso Nichols C., Garon lardière S., Bowman J.P., Nichols P.D., Gibson J.A.E. and Guézennec, J. 2005. Chemical characterization of exopolysaccharides from Antarctic marine bacteria. Microbial Ecology, 49: 578-589.
Michel D., and Kaufmann M.R. 1973. The osmotic potential of polyethylen Glycol 6000. Plant Physiology, 51: 914-916.
Milagers M.F., Machuca A. and Napoleao D. 1999. Detection of siderophore production from sevrel fungi and bacteria by chrome azurol S (CAS) agar plate assay. Journal of Microbiological Methods, 37: 1-6.
Moraine RA., and Rogovin P. 1966. Kinetics of polysaccharide B-1459 fermentation. Biotechnology Bioengineering, 8: 511-524.
Nabeel M.A., Kathiresan K., Rajendran N., Ohnishi H., Hamaoka H. and Omori K. 2010. Contribution by microbes to the foodweb of a mangrove biotope: the approach of carbon and nitrogen stable isotopes. African Journal of Marine Science, 32(1): 65– 70.
Oren A. 2010. Industrial and environmental applications of halophilic microorganisms. Environmental Technology, 3(1): 825-834.
Panwar M., Tewari R., Gulati A., and Nayyar H. 2016. Indigenous salt-tolerant rhizobacterium Pantoea dispersa (PSB3) reduces sodium uptake and mitigates the effects of salt stress on growth and yield of chickpea. Acta Physiologiae Plantarum, 38: 278
Patten C., and Glick B.R. 1996. Bacterial biosynthesis of indole-3-acetic acid. Canadian Journal of Microbiology, 42: 207-220.
Paul S., Bandeppa., Aggarwal Ch., Thakur, J.K., Rathi, M.S. and Khan, M.A. 2014. Effect of salt on growth and plant growth promoting activities of Azotobacter chroococcum isolated from saline soils. Environment and Ecology, 32 (4): 1255-1259.
Qurashi A.W., and Sabri A.N. 2012. Biofilm formation in moderately halophilic bacteria is influenced by varying salinity levels. Journal of Basic Microbiology, 52: 566-572.
Rodriguez-Valera F., Ruiz-Berraquero F. and Ramos-Cormenzana A. 1981. Characteristics of the heterotrophic bacterial populations in hypersaline environments of different salt concentrations. Microbial Ecology, 7: 235-243.
Ruppel S., Franken Ph. and Witzel K. 2013. Properties of the halophyte microbiome and their implications for plant salt tolerance. Functional Plant Biology, 40: 940–951.
Savostin, P., 1972. Microbial transformation of silicates. Zeitschrift für Pflanzenernährung und Bodenkunde, 132(1): 37-45.
ShengX. F., and He L.Y. 2006. Solubilization of potassium bearing minerals by a wild type strain of Bacillus edaphicus and its mutants and increased potassium uptake by wheat. Canadian Journal of Microbiology, 52(1): 66-72.
Shilev S., Sancho E.D. and Benlloch-Gonza’lez M. 2012. Rhizospheric bacteria alleviate salt-producced stress in sunflower. Journal of Environmental Management, 95: 37-41.
Sperber J.I. 1958. The incidence of apatite solubilizing organisms in the rhizosphere. Australian Journal of Agricultural Research, 9: 778-781.
Sundra B., Natarajam V. and Hari K. 2002. Influence of phosphorus solubilizing bacteria on the changes in soil available phosphorus and sugarcane and sugar yields. Field Crops Research, 77: 43-49
Tiwari S., Singh P., Tiwari R., Meena K.K., Yandigeri M., Singh D.P. and Arora D.K. 2011. Salt-tolerant rhizobacteria-mediated induced tolerance in wheat(Triticum aestivum) and chemical diversity in rhizosphere enhance plant growth. Biology and Fertility of Soils, 47(8): 907-916.
Yoshimura H., Kotake T., Aohara T., Tsumuraya Y., Ikeuchi M. and Ohmori M. 2012. The role of extracellular polysaccharides produced by the terrestrial cyanobacterium Nostoc sp. strain HK-01 in NaCl tolerance. Journal of Applied Phycology, 24(2): 237-243. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,733 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,362 |