| تعداد نشریات | 14 |
| تعداد شمارهها | 212 |
| تعداد مقالات | 2,005 |
| تعداد مشاهده مقاله | 3,506,141 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 2,833,782 |
تاثیر استفاده ازملاتونین، کیتوزان و هیدروکسی پروپیل متیلسلولز بر برخی صفات فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی انار Punica granatum L. تحت تنش شوری | ||
| پژوهش های میوه کاری | ||
| دوره 8، شماره 2، اسفند 1402، صفحه 116-130 اصل مقاله (798.12 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.30466/rip.2022.54230.1237 | ||
| نویسندگان | ||
| سید مرتضی زاهدی* 1؛ رقیه نایبی2؛ غلامرضا گوهری1؛ فرزاد رسولی3؛ مینا مرجانی4 | ||
| 1دانشیار گروه علوم و مهندسی باغبانی ، دانشکده کشاورزی، دانشگاه مراغه، مراغه، ایران. | ||
| 2کارشناسی ارشد گروه علوم و مهندسی باغبانی ، دانشکده کشاورزی، دانشگاه مراغه، مراغه، ایران. | ||
| 3استادیار گروه علوم و مهندسی باغبانی ، دانشکده کشاورزی، دانشگاه مراغه، مراغه، ایران. | ||
| 4کارشناسی ارشد گروه علوم و مهندسی باغبانی ، دانشکده کشاورزی، دانشگاه مراغه، مراغه، ایران. | ||
| چکیده | ||
| انار از مهمترین محصولات باغبانی است و ایران یکی از تولیدکنندههای عمده آن در جهان به شمار میرود از طرفی شوری از مهمترین مشکلات محیطی در مناطق خشک و نیمهخشک است. اخیرا کاربرد محرکهای زیستی در کاهش اثرات نامطلوب تنشهای محیطی از جمله شوری افزایش یافته است. پژوهش حاضر جهت بررسی اثرات پیشتیمار غلظتهای مختلف کیتوزان، ملاتونین و هیدروکسی پروپیل متیلسلولز (HPMC) روی نهالهای دوساله انار (رقم ملس ساوه) در شرایط تنش شوری بصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی با سه تکرار در گلخانه تحقیقاتی دانشگاه مراغه اجرا شد. فاکتور اول شامل شوری در دو سطح (صفر و 100 میلیمولار کلرید سدیم) و فاکتور دوم شامل پیشتیمار ملاتونین با غلظت 50 میلیگرم در لیتر، کیتوزان، HPMC، و ترکیب ملاتونین پوششدار شده با کیتوزان و HPMC همه با غلظت 100 میلیگرم در لیتر و آب مقطر به عنوان شاهد بود. نتایج نشان داد تنش شوری منجر به کاهش تعداد برگ، میزان رنگیزههای فتوسنتزی و پایداری غشاء گردید؛ اما میزان پرولین، سوپراکسیددیسموتاز و مالوندیآلدئید را افزایش داد. همچنین پیشتیمار ترکیبی HPMC، ملاتونین و کیتوزان منجر به افزایش تعداد برگ، رنگیزههای فتوسنتزی، پایداری غشاء، فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانی و کاهش مالوندیآلدئید گردید. بعلاوه استفاده از پیشتیمار ملاتونین به تنهایی نیز اثرات مثبتی بر رشد گیاه و کاهش میزان پراکسیدهیدروژن داشت. بر اساس نتایج پژوهش حاضر به منظور کاهش اثرات منفی تنش شوری پیشتیمار ترکیبات HPMC، ملاتونین و کیتوزان و بویژه ملاتونین پوششدار شده با کیتوزان و HPMC توصیه میشود. | ||
| کلیدواژهها | ||
| محلولدهی؛ محرک زیستی؛ نهال؛ تنش اکسیداتیو | ||
| مراجع | ||
|
آمارنامه کشاورزی، اداره کل آمار و اطلاعات وزارت جهاد کشاورزی، 1399.
امیری، ا.، مهر، س.، یداللهی، پ.، اصغریپور، م.ر. و اسماعیلزادهبهابادی، ص. 1395. تأثیر تنش خشکی و محلولپاشی اسید سالیسیلیک و کیتوزان بر رنگیزههای فتوسنتزی و آنزیمهای آنتیاکسیدانی گلرنگ. بهزراعی کشاورزی، 18(2)، 453-466.
جامی، س.، اسمعیلزادهبهابادی، ص. و مدرس، م. 1397. تأثیر کیتوزان بر ریزازدیادی، محتوی متابولیتهای ثانویه و فعالیت آنتیاکسیدانی گیاه نوروزک (.Salvia leriifolia Benth). مجله پژوهشهای گیاهی (مجله زیستشناسی ایران)، 31(3): 568-578.
زارعزینلی. م.، نصیبی، ف.، منوچهریکلانتری، خ. و احمدیموسوی، ع.ا. 1398. اثر پیشتیمار ملاتونین بر برخی پارامترهای فیزیولوژیکی و کاهش تنش اکسیداتیو در گیاهچههای جعفری زینتی تحت تنش شوری. فرآیند و کارکرد گیاهی، 9(35): 115-125.
سوری، ن.، بخشی، د.، رضایینژاد، ع.ا. و فیضیان، م. 1397. ارزیابی پاسخهای فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی برخی از ارقام انار تجاری ایرانی به تنش شوری. فرآیند و کارکرد گیاهی، 8(32): 51-68.
طاهریان، م.، بیهمتا، م.ر.، پیغمبری، س.ع. و علیزاده، ه. 1394. تأثیر تنش شوری بر تجمع و آزادسازی مواد نورساختی میانگرههای ساقه در ژنوتیپهای مختلف جو، علوم گیاهان زراعی ایران، 46(4): 657-671.
محمدی، ی.، فیروزآبادی، م.، غلامی، ا. و مکاریان، ح. 1398. تأثیر محلولپاشی ملاتونین و ویتامینهای گروه ب بر عملکرد و برخی خصوصیات فیزیولوژیکی سویا (Glycine max). انجمن فیزیولوژی گیاهی ایران، 9(35): 359-376.
مهدوی، ب.، مدرسثانوی، س.ع.م.، آقاعلیخانی، م. و شریفی، م. 1392. اثر غلظتهای مختلف کیتوزان بر جوانهزنی بذر و آنزیمهای آنتیاکسیدانت گلرنگ (Carthamus tinctorius L.) در شرایط تنش کم آبی. مجله پژوهشهای گیاهی (مجله زیست شناسی ایران)، 26 (3): 352-365.
Akhavan, H., Barzegar, M., Weidlich, H. and Zimmermann, B.F. 2015. Phenolic compounds and antioxidant activity of juices from ten Iranian pomegranate cultivars depend on extraction. Journal of Chemistry, 2015(1): 907101.
Arnon, D.I. 1949. Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant physiology, 24(1): 1.
Bates, L.S., Waldren, R.A. and Teare, I.D. 1973. Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and soil, 39: 205-207.
Bradford, M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical biochemistry, 72(1-2): 248-254.
Caccavo, D., Cascone, S., Apicella, P., Lamberti, G. and Barba, A.A. 2017. HPMC-based granules for prolonged release of phytostrengtheners in agriculture. Chemical Engineering Communications, 204(12): 1333-1340.
Chiou, M.J., Wang, Y.D., Kuo, C.M., Chen, J.C. and Chen, J.Y. 2007. Functional analysis of mitogen-activated protein kinase-3 (MAPK3) and its regulation of the promoter region in zebrafish. DNA and Cell Biology, 26(11): 781-790.
Elsheery, N.I., Helaly, M.N., El-Hoseiny, H.M. and Alam-Eldein, S.M. 2020. Zinc oxide and silicone nanoparticles to improve the resistance mechanism and annual productivity of salt-stressed mango trees. Agronomy, 10(4): 558.
Gao, H., Zhang, Z.K., Chai, H.K., Cheng, N., Yang, Y., Wang, D.N., Yang, T. and Cao, W. 2016. Melatonin treatment delays postharvest senescence and regulates reactive oxygen species metabolism in peach fruit. Postharvest Biology and Technology, 118: 103-110.
Gill, S.S. and Tuteja, N. 2010. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant physiology and biochemistry, 48(12): 909-930.
Gupta, A.S., Webb, R.P., Holaday, A.S. and Allen, R.D. 1993. Overexpression of superoxide dismutase protects plants from oxidative stress (induction of ascorbate peroxidase in superoxide dismutase-overexpressing plants). Plant Physiology, 103(4): 1067-1073.
Prashanth, K.V.H., Dharmesh, S.M., Rao, K.S.J. and Tharanathan, R.N. 2007. Free radical-induced chitosan depolymerized products protect calf thymus DNA from oxidative damage. Carbohydrate Research, 342(2): 190-195.
Hassnain, M., Alam, I., Ahmad, A., Basit, I., Ullah, N., Alam, I., Ullah, M.A., Khalid, B., Shair, M.M. and Ain, N. 2020. Efficacy of chitosan on performance of tomato (Lycopersicon esculentum L.) plant under water stress condition. Pakistan Journal of Agricultural Research, 33(1): 27-41.
Heath, R.L. and Packer, L. 1968. Photoperoxidation in isolated chloroplasts: I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of biochemistry and biophysics, 125(1): 189-198.
Hidangmayum, A., Dwivedi, P., Katiyar, D. and Hemantaranjan, A. 2019. Application of chitosan on plant responses with special reference to abiotic stress. Physiology and molecular biology of plants, 25(2): 313-326.
Ibrahim, H.I. 2016. Tolerance of two pomegranates cultivars (Punica granatum L.) to salinity stress under hydroponic culture conditions. Journal of Basic and Applied Scientific Research, 6(4): 38-46.
Jiang ChaoQiang, J.C., Cui QuanRen, C.Q., Feng Kun, F.K., Xu DaFeng, X.D., Li ChengFeng, L.C. and Zheng QingSong, Z.Q. 2016. Melatonin improves antioxidant capacity and ion homeostasis and enhances salt tolerance in maize seedlings. Acta Physiologiae Plantarum, 38(4): 82.
Kaya, C., ASHRAF, M., Sönmez, O., Tuna, A.L. and Aydemir, S. 2015. Exogenously applied nitric oxide confers tolerance to salinity-induced oxidativestress in two maizes (Zea mays L.) cultivars differing in salinity tolerance. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 39(6): 909-919.
Koyro, H.W. 2006. Effect of salinity on growth, photosynthesis, water relations and solute composition of the potential cash crop halophyte Plantago coronopus (L.). Environmental and Experimental Botany, 56(2): 136-146.
Martínez González, L., Reyes Guerrero, Y., Falcón Rodríguez, A. and Núñez Vázquez, M. 2015. Effect of seed treatment with chitosan on the growth of rice (Oryza sativa L.) seedlings cv. INCA LP-5 in saline medium. Cultivos Tropicales, 36(1): 143-150.
Martinez, G., Reyes, G., Falcón, R. and Nunez, V. 2015. Effect of seed treatment with chitosan on the growth of rice (Oryza sativa L.) seedlings cv. INCA LP-5 in saline medium. Cultivos Tropicales, 36(1): 143-150.
Nasr, F., Pateiro, M., Rabiei, V., Razavi, F., Formaneck, S., Gohari, G. and Lorenzo, J.M. 2021. Chitosan-phenylalanine nanoparticles (Cs-Phe Nps) extend the postharvest life of persimmon (Diospyros kaki) fruits under chilling stress. Coatings, 11(7): 819.
Premachandra, G.S., Saneoka, H., Fujita, K. and Ogata, S. 1993. Seasonal changes in leaf water relations and cell membrane stability in orchardgrass (Dactylis glomerata). The Journal of Agricultural Science, 121(2): 169-175.
Radi, A.A., Farghaly, F.A. and Hamada, A.M. 2013. Physiological and biochemical responses of salt-tolerant and salt-sensitive wheat and bean cultivars to salinity. Journal of Biology and Earth Sciences, 3(1): 72-88.
Ray, S.R., Bhuiyan, M.J.H., Anowar, M., Hossain, S.M. and Tahjib-Ul-Arif, M. 2015. Chitosan suppresses antioxidant enzyme activities for mitigating salt stress in mungbean varieties. OSR Journal Agriculture and Veterinary Science, 9(9): 36-41.
Ruan, S.L. and Xue, Q.Z. 2002. Effects of chitosan coating on seed germination and salt-tolerance of seedlings in hybrid rice (Oryza sativa L.). Acta Agronomica Sinica, 28(6): 803-808.
Sairam, R.K., Deshmukh, P.S. and Shukla, D.S. 1997. Tolerance of drought and temperature stress in relation to increased antioxidant enzyme activity in wheat. Journal of Agronomy and Crop Science, 178(3), 171-178.
Velikova, V., Yordanov, I. and Edreva, A.J.P.S. 2000. Oxidative stress and some antioxidant systems in acid rain-treated bean plants: protective role of exogenous polyamines. Plant science, 151(1): 59-66.
Zahedi, S.M., Hosseini, M.S., Abadía, J. and Marjani, M. 2020. Melatonin foliar sprays elicit salinity stress tolerance and enhance fruit yield and quality in strawberry (Fragaria× ananassa Duch.). Plant Physiology and Biochemistry, 149: 313-323.
Zahedi, S.M., Hosseini, M.S., Fahadi Hoveizeh, N., Gholami, R., Abdelrahman, M. and Tran, L.S.P. 2021. Exogenous melatonin mitigates salinity‐induced damage in olive seedlings by modulating ion homeostasis, antioxidant defense, and phytohormone balance. Physiologia Plantarum, 173(4): 1682-1694.
Zhang, L., Ma, H., Chen, T., Pen, J., Yu, S. and Zhao, X. 2014. Morphological and physiological responses of cotton (Gossypium hirsutum L.) plants to salinity. PLoS One, 9(11): e112807. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,470 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 880 |
||